Cosecha
Uso de maduradores en caña de azúcar
Sandoval Pineda, J. F.; Villegas Trujillo, F. | NOV 2023 | ISBN 978-958-8449-29-6
Introducción
La caña de azúcar en el valle del río Cauca crece en diferentes condiciones climáticas y de manejo que afectan directamente la maduración del cultivo. En tal sentido, precipitaciones abundantes y temperaturas nocturnas elevadas, al igual que excesos en la fertilización nitrogenada y riegos tardíos, promueven incrementos en las tasas de crecimiento y respiración de la planta en la etapa de maduración. Estos factores poco favorables para la maduración natural reducen la cantidad potencial de sacarosa que podría almacenarse en los entrenudos (Unigarro & Villegas, 2020).
Dado que no es posible asegurar siempre las condiciones ideales para la maduración, ya que éstas dependen de la variabilidad espacial y temporal de la zona donde se ubican los cultivos, se requiere usar productos maduradores con el fin de reducir el gasto respiratorio, regular el crecimiento de la planta y promover la translocación de carbohidratos hacia los entrenudos. Por consiguiente, un madurador ideal de la caña de azúcar sería aquel que mejore los contenidos de sacarosa de manera rápida, consistente y económica, sin dañar el cultivo, ni su siguiente ciclo ni los cultivos vecinos, además de poseer una baja toxicidad para los mamíferos y una vida media ambiental corta (Moore & Botha, 2015).
A continuación, se resume la evolución del uso de maduradores en la caña de azúcar y se explican diferentes aspectos técnicos como la variedad, el tipo de ingrediente, la dosis, el volumen de descarga y el tiempo transcurrido entre la aplicación y la cosecha, que inciden en la cantidad de sacarosa adicional que se puede recuperar al momento del corte. Con ello este documento busca brindar herramientas para tomar decisiones con criterio técnico que permitan maximizar la producción de azúcar en las condiciones ambientales del valle del río Cauca.
Acerca de los autores
Sandoval Pineda, J. F.
Ingeniero agrónomo y magíster en fisiología de cultivos de la Universidad Nacional de Colombia sede Bogotá. Jhon Felipe desempeña su labor en Cenicaña como coordinador del área de Fitotecnia investigando estrategias innovadoras y sostenibles para el manejo de la maduración inducida en caña de azúcar a lo largo del valle del río Cauca.
Villegas Trujillo, F.
Ingeniero agrícola del convenio entre la Universidad del Valle y la Universidad Nacional de Colombia (Sede Palmira). Es Magíster en Suelos y Aguas de la Universidad Nacional de Colombia. Se vinculó a Cenicaña en 1984, al Programa de Agronomía, en donde realizó investigación en las áreas de manejo de aguas, prácticas culturales, mecanización agrícola y maduración de la caña de azúcar. En esta última área, trabajó en proyectos con énfasis en evaluación de maduradores, el mejoramiento del contenido de sacarosa de las nuevas variedades y en el estudio de los factores que afectan la productividad del cultivo de la caña de azúcar en el valle del río Cauca. Desde junio de 2018 se desempeña en la jefatura del Servicio de Cooperación Técnica y Transferencia de Tecnología de Cenicaña.
Broadley M., Brown P., Cakmak I., Rengel Z., Zhao F. (2011). Function of nutrients: Micronutrients. In Marschner’s mineral nutrition of higher plants: Third Edition. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384905-2.00007-8
Cenicaña (2022). Informe Anual. Cali.
Chacravarti A., Srivastava D., Khanna I. (1956). Application of phytohormone to sugarcane. International Society Sugar Cane Technologist (ISSCT), pp. 355–364.
Chen Z., Qin C., Wang M., Liao F., Liao Q., Liu X., Li Y., Lakshmanan P., Long M., Huang D. (2019). Ethylene-mediated improvement in sucrose accumulation in ripening sugarcane involves increased sink strength. BMC Plant Biology, 19(1), 1–17. https://doi.org/10.1186/s12870-019-1882-z
Coleman R., Todd E., Stokes I., Coleman O. (1960). The effect of gibberellic acid on sugarcane. International Society Sugar Cane Technologist (ISSCT), 588–603.
Cuhra M., Bøhn T., Cuhra, P. (2016). Glyphosate: Too much of a good thing? Frontiers in Environmental Science, 4(APR), 1–14. https://doi.org/10.3389/fenvs.2016.00028
Dreyer I., Gómez-Porras J. L., Riedelsberger J. (2017). The potassium battery: a mobile energy source for transport processes in plant vascular tissues. New Phytologist, 216(4), 1049–1053. https://doi.org/10.1111/nph.14667
Du W., Pan Z. Y., Hussain S. B., Han Z. X., Peng S. A., Liu Y. Z. (2020). Foliar supplied boron can be transported to roots as a boron-sucrose complex via phloem in citrus trees. Frontiers in Plant Science, 11(March), 1–11. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00250
Faria A. T., Ferreira E. A., Rocha P. R. R., Silva D. V., Silva A. A., Fialho C. M. T., Silva A. F. (2015). Effect of trinexapac-ethyl on growth and yield of sugarcane. Planta Daninha, 33(3), 491–497. https://doi.org/10.1590/S0100-83582015000300011
Gravois K., Viator H., Reagan G., Beuzelin J., Griffin J., Tubana B., Hoy J., Agents C. (2001). Sugarcane Production Handbook – 2001.
Hammond J. P., White P. J. (2008). Sucrose transport in the phloem: Integrating root responses to phosphorus starvation. Journal of Experimental Botany, 59(1), 93–109. https://doi.org/10.1093/jxb/erm221
Lemoine R., La Camera S., Atanassova R., Dédaldéchamp F., Allario T., Pourtau N., Bonnemain J. L., Laloi M., Coutos-Thévenot P., Maurousset L., Faucher M., Girousse C., Lemonnier P., Parrilla J., Durand M. (2013). Source-to-sink transport of sugar and regulation by environmental factors. Frontiers in Plant Science, 4(Jul), 1–21. https://doi.org/10.3389/fpls.2013.00272
Liu Z., Li P., Sun X., Zhou F., Yang C., Li L., Matsumoto H., Luo X. (2017). Fluazifop-P-butyl induced ROS generation with IAA (indole-3-acetic acid) oxidation in Acanthospermum hispidum D.C. Pesticide Biochemistry and Physiology, 143(October), 312–318.https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2017.10.005
Luo X., Matsumoto H., Usui K. (2001). Comparison of physiological effects of fluazifop-butyl and sethoxydim on oat (Avena sativa L.). Weed Biology and Management, 1(2),120–127. https://doi.org/10.1046/j.1445-6664.2001.00019.x
Melgar M., Meneses A., Orozco H., Pérez O., Espinosa R. (2014). El Cultivo de la Caña de Azúcar en Guatemala. Artemis Edineter SA.
Mishra S., Heckathorn S. (2016). Boron stress and plant carbon and nitrogen relations. In Progress in Botany (pp. 333–355). https://doi.org/10.1007/978-3-319-25688-7_11
Moore P., Botha C. F. (2015). Sugarcane physiology, biochemestry & functional biology (Vol. 53, Issue 9). Wiley Blackwell. Quevedo-Amaya Y.M., Sandoval-Pineda J.F., Lopez M.L. 2021. Mejoramiento de la dinamica natural de la acumulación de sacarosa en variedades de alto tonelaje. Revista Tecnicaña. 52:12-14.
Romero R., Scandaliaris J., Rufino M. (2000). Fluazifop butil. Su empleo como madurador químico de la caña de azúcar en Tucumán – Argentina.
Solomon S., Li Y. rui. (2004). Chemical ripening of sugarcane: Global progress and recent developments in China. Sugar Tech, 6(4), 241–249. https://doi.org/10.1007/BF02942504
Spaunhorst D. J., Todd J. R. & Hale A. L. (2019). Sugarcane cultivar response to glyphosate and trinexapac-ethyl ripeners in Louisiana. PLoS ONE, 14(6), 1–10. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0218656
Su L. Y., De la Cruz A., Moore P. H., Maretzki A. (1992). The relationship of glyphosate treatment to sugar metabolism in sugarcane: new physiological insights. Journal of Plant Physiology, 140(2), 168–173. https://doi.org/10.1016/S0176-1617(11)80929-6
Unigarro C., Villegas F. (2020). Effects of meteorological variables on sugarcane ripening in the Cauca River Valley, Colombia. Pesquisa Agropecuaria Tropical, 50, 1–8. https://doi.org/10.1590/1983-40632020v5060815
Van Heerden P. D. R., Mbatha T. P. Ngxaliwe S. (2015). Chemical ripening of sugarcane with trinexapac-ethyl (Moddus®) — Mode of action and comparative efficacy. Field Crops Research, 181, 69–75. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2015.06.013
Villegas F. (2010). Maduración y uso de maduradores en caña de azúcar.
Villegas F., Arcila J. (1995). Uso de madurantes. El cultivo de la caña en la zona azucarera de Colombia, 394.
Wang J., Nayak S., Koch K., Ming R. (2013). Carbon partitioning in sugarcane (Saccharum species). Frontiers in Plant Science, 4(Jun). https://doi.org/10.3389/fpls.2013.00201
Wimmer M. A., Abreu I., Bell R. W., Bienert M. D., Brown P. H., Dell B., Fujiwara T., Goldbach H. E., Lehto T., Mock H. P., Von Wirén N., Bassil E., Bienert G. P. (2020). Boron: an essential element for vascular plants: A comment on Lewis (2019) ‘Boron: the essential element for vascular plants that never was.’ New Phytologist, 226(5), 1232–1237. https://doi.org/10.1111/nph.16127
Wu W., Du K., Kang X., Wei H. (2021). The diverse roles of cytokinins in regulating leaf development. Horticulture Research, 8(1). https://doi.org/10.1038/s41438-021-00558-3
- Caña de azúcar. 2. Maduración. 3. Productos químicos agrícolas.
Sandoval Pineda, J. F. & Villegas Trujillo, F. (2023). Uso de maduradores en caña de azúcar. En: Centro de investigación de la caña de azúcar de Colombia (Ed). Agroindustria de la caña de azúcar en Colombia. Cenicaña